ZY Quant Star qPCR Premix
ZY Quant Star qPCR Premix
ZY Quant Star qPCR Premix采用即用型2×预混液,除引物与DNA模板外组分齐全。
抗体法热启动酶可抑制非特异性扩增与引物二聚体,内置Universal校正染料,兼容主流qPCR平台。
  • 2×

    即用型预混液

  • Universal ROX

    兼容主流qPCR平台

  • 80–200 bp

    推荐扩增片段长度

  • 40 cycles

    推荐扩增循环数

产品简介

ZY Quant Star qPCR Premix · 一步加样,精准定量

ZY Quant Star qPCR Premix 是质因生物推出的 SYBR Green I 嵌合荧光染料法专用实时荧光定量 PCR 试剂。采用 2× 预混液形式,已包含除引物与 DNA 模板以外的全部 qPCR 组分,显著简化加样流程、缩短操作时间、降低交叉污染几率。

核心组分为经抗体修饰的热启动 Taq DNA 聚合酶,配合优化 Buffer 体系与 PCR 反应促进因子,可有效抑制非特异性扩增与引物二聚体。预混液加入 Universal 校正染料,兼容需要 ROX 校正的各类 qPCR 仪器,无需额外添加染料。

  • SYBR Green I 染料法
  • 抗体法热启动 Taq DNA 聚合酶
  • Universal 校正染料,兼容主流 qPCR 平台
ZY Quant Star qPCR Premix实时荧光定量PCR

订购信息

产品名称 货号 规格 检测方法 价格
ZY Quant Star
qPCR Premix
ZY-QS-1000 1 mL SYBR Green I 染料法
(实时荧光定量 PCR)
询价

核心优势

即用、特异、通用且适配高通量实验
  • 即用型 2× 预混液
    含除引物与模板外的全部组分,减少加样步骤与污染风险。
  • 抗体法热启动酶
    低温抑制聚合酶活性,预变性后释放,提升特异性与灵敏度。
  • Universal 校正染料
    兼容所有主流 qPCR 仪,无需额外添加或调整 ROX 浓度。
  • 宽广模板区间
    对较高至较低拷贝数模板均具良好线性关系。
  • 操作简便
    缩短加样时间,降低体系配制污染几率,适合高通量与重复实验。

适用范围

qPCR实验与扩增曲线
  • 基因表达相对定量(2-ΔΔCt 法)
  • 目的基因绝对定量(标准曲线法)
  • cDNA、基因组 DNA 等模板的特异性定量检测
  • mRNA 表达水平分析(配合 RNA 提取与反转录实验)

使用方法与反应程序

推荐反应体系(10 μL)
试剂 使用量
ZY Quant Star qPCR Premix 5 μL
正向引物(10 μM) 0.4 μL
反向引物(10 μM) 0.4 μL
DNA 模板 X μL
Nuclease-Free Water 补足至 10 μL
两步法反应程序(推荐)
步骤 温度 时间 循环数
预变性 95℃ 30 sec —
变性 95℃ 10 sec 40 个循环
退火 & 延伸 60℃ 30 sec
熔解曲线 仪器默认 仪器默认 —
三步法反应程序
步骤 温度 时间 循环数
预变性 95℃ 30 sec —
变性 95℃ 10 sec 40 个循环
退火 55–65℃ 10 sec
延伸 72℃ 30 sec
熔解曲线 仪器默认 仪器默认 —

推荐模板加样量 1–2 μL;未稀释 cDNA 原液不超过总反应体系的 10%。退火/延伸温度依据引物 Tm 值设定;扩增片段 ≤200 bp 时延伸时间可设为 15 sec。Mix 应避强光,使用前轻柔混匀,请勿涡旋振荡;无需额外添加 ROX。

实验优化与引物设计

  • 引物浓度
    终浓度 0.1–1.0 μM。浓度越低特异性越高,但扩增效率略降,可按需平衡。
  • 扩增程序
    提高特异性可采用两步法或提高退火温度;提高扩增效率可采用三步法或延长延伸时间。
  • 扩增产物
    推荐长度 80–200 bp。
  • 引物参数
    引物长度 18–23 bp;两条引物 Tm 值相差 ≤1℃,Tm 控制在 58–62℃;GC 含量 40%–60%。
  • 序列原则
    碱基分布尽量均匀,避开 T/C 或 A/G 连续结构;3' 端末位优选 G 或 C,避免内部及引物间互补。
  • 特异性验证
    使用 NCBI BLAST 检索确认引物特异性。

常见问题

qPCR 反应需要额外添加 ROX 吗?

不需要。Mix 含 Universal 校正染料,适用于所有机型,配制体系时只需加入引物与模板。

扩增曲线不光滑?

多为荧光信号太弱、经系统校正后产生。确保预混染料未降解,并使用荧光信号收集更好的 qPCR 专用耗材。

扩增曲线断裂或下滑?

常因模板浓度较高、基线终点值大于 Cq 值。可减小基线终点(Cq 值 -4)后重新分析数据。

个别孔扩增曲线突然骤降?

通常由反应管内气泡导致。确保 Mix 完全溶解、勿涡旋;加样后轻弹离心;可延长预变性至 10 min。

反应结束无扩增曲线?

检查循环数是否达到 40、荧光采集步骤是否正确、引物是否降解,以及模板浓度是否过低或模板是否降解。

Cq 值出现过晚?

可能由扩增效率低、模板浓度过低、模板降解、产物过长或 PCR 抑制剂引起,可提高引物浓度、改用三步法、重新设计引物或加大模板稀释倍数。

熔解曲线出现多峰?

可能是引物设计不佳或浓度过高,或 cDNA 模板存在基因组污染。可重新设计引物、降低浓度或用 DNA 酶去除基因组污染。

实验重复性差?

注意加样误差、模板浓度及仪器孔间温度偏差。使用精准移液器和高品质吸头,必要时放大反应体积并定期校准仪器。

空白对照出现信号?

可能为体系污染或引物二聚体。先更换空白对照用水,仍异常则更换引物、吸头、PCR 管或启用新 Mix,并在超净台内配制。

两步法还是三步法更好?

常规推荐两步法;提高特异性可提高退火温度或使用两步法,提高扩增效率可使用三步法或延长延伸时间。

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